Dr Franciska Vidáné Erdő

Nationalité
Hungary
Programme
SMART LOIRE VALLEY PROGRAMME
Domaine scientifique
Période
janvier, 2022 - avril, 2022
Award
LE STUDIUM Visiting Researcher 

Établissement d'origine

Pázmány Péter Catholic University, Faculty of Information Technology and Bionics, HU

Laboratoire d'accueil

Nanomédicaments et Nanosondes (MNMS), Université de Tours - FR

Hôte scientifique

Dr Franck Bonnier  

BIOGRAPHIE

Franciska Erdő a obtenu son doctorat en pharmacologie à l'Institut de recherche sur les médicaments de Budapest et à l'Université Semmelweis, Faculté de pharmacie, Budapest, Hongrie. Elle a ensuite travaillé pour différents instituts de recherche biomédicale (BIOREX Ltd, Veszprém, IVAX Drug Research Institute, Budapest) et a rejoint le groupe de recherche de l'Institut Max Planck pour la recherche neurologique, Cologne, Allemagne et l'Université Charité, Berlin, Allemagne. Elle s'intéresse principalement à l'étude et à la modélisation expérimentale de la physiopathologie des accidents vasculaires cérébraux, ainsi qu'au développement de stratégies thérapeutiques contre ces accidents. Elle a ensuite rejoint Sanofi-Aventis -Chinoin et SOLVO Biotechnology. Depuis novembre 2014, Franciska Erdő travaille pour l'Université catholique Pázmány Péter, Faculté de technologie de l'information et de bionique, à Budapest. Son expertise porte sur les barrières physiologiques et l'administration de médicaments à travers ces barrières. Actuellement, elle est impliquée dans l'analyse de la peau et la spectroscopie RAMAN à l'Université de Tours, France.

PROJET

Transfert de connaissances sur la spectroscopie Raman et la technologie skin-on-a-chip pour étudier l'administration transdermique de médicaments

L’administration de médicaments par voie transcutanée présente de multiples avantages pour les patients en termes de confort (non-invasif) et d'efficacité (contournement fonction hépatique, libération et absorption continues et régulières). Les techniques d'administration topique de médicaments ont connu un développement rapide afin de proposer des formulations médicamenteuses appropriées pour diverses indications (douleur, inflammation, troubles du système nerveux central, thérapies humorales). Les protocoles bioanalytiques jouent un rôle clé dans le processus d'investigation et d'optimisation en apportant des informations sur des paramètres critiques tels que la biodisponibilité et la pharmacocinétique des molécules actives. Les tests in vitro de perméation transcutanée sont incontournables dans les premiers stades du développement de nouvelles formules, avec de fortes attentes du secteur R&D en matière d’innovations. Pázmány Péter Catholic University et l'Université de Tours aborderont conjointement 2 aspects clés:

1. Modèles de peau in vitro: Généralement, la peau reconstruite (culture tissulaire) ou la peau excisée (chirurgie plastique) sont utilisées. Ces modèles doivent refléter le plus fidèlement les conditions in vivo (pénétration similaire) pour identifier et cribler rapidement les formulations et les médicaments pertinents. Une technologie microfluidique innovante, « skin-on-a-chip », à faible coût sera développée.

2. Protocoles analytiques: Une approche multi-méthodologique (Chromatographie, imagerie Raman, imagerie ultrasons) sera déployée pour valider la technologie « skin-on-a-chip » pour l’étude de la perméation transcutanée. L’imagerie Raman sera proposée pour a) Etablir des profils de pénétration à l'échelle micrométrique et b) Etudier les interactions moléculaires entre la peau et les formules topiques en corrélant l'état physiologique de la barrière cutanée (organisation et conformation des lipides/protéines) et les cinétiques de pénétration.

Events organised by this fellow

Publications

Final reports

Franciska Erdő, Hichem Kichou, Franck Bonnier, Emilie Munnier, Igor Chourpa
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Several ex vivo and in vitro skin models are available in the toolbox of dermatological and cosmetic research. Some of them are widely used in drug penetration testing. The excised skins show higher variability, while the in vitro skins provide more reproducible data. The aim of the current study was to compare the chemical composition of different skin models (excised rat skin, human skin and human reconstructed epidermis) by measurement of ceramides, cholesterol, lactate, urea, protein and water at different dephts of the tissues. The second goal was to compile a testing system which includes a skin-on-a-chip diffusion setup and a confocal Raman spectroscopy for testing drug diffusion across the skin barrier and accumulation in the tissue models. A hydrophylic drug caffeine and the P-glycoprotein substrate quinidine were used in the study as a topical cream formulation. The results indicate that although the transdermal diffusion of quinidine is lower, the skin accumulation was similar for the two drugs. The different skin models allowed comparable permeability for both compounds, but chemical composition differed. The human skin was abundant in ceramides and cholesterol, while the reconstructed skin contained less water and more urea and protein. Based on these results it can be concluded that skin-chip and confocal Raman microspectroscopy are suitable for monitoring drug penetration and distribution in different skin layers during and at the end of exposure. Furthermore, the human skin obtained from obese patients is not the most relevant model for skin absorption testing in pharmaceutical research.